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人脂肪来源的干细胞原代分离培养操作方案

更新时间:2026-06-29 10:50:08       点击次数:26

具体流程如下:

1. 取临床来源人体脂肪组织称重,添加含 2% 双抗的 PBS 溶液洗涤 3 次;

2. 无菌条件下使用眼科剪,将脂肪组织剪至体积约 1mm³的细小组织块;

3. 加入5mL I型胶原酶,置于 37℃、80rpm 摇床消化 50~60 min;

4. 加入等体积完全培养基中和胶原酶,终止消化反应;

5. 采用 70μm细胞筛过滤悬液,除去未充分消化的结缔组织与细胞团;

6. 室温条件下 1800 rpm 离心 10 min;

7. 离心后上层漂浮大量脂滴,先用吸管吸取大部分脂滴,再弃去全部上清;

8. 配制完全培养基(DMEM/F12 + 10% 胎牛血清 FBS + 1% 双抗)重悬细胞沉淀;

9. 细胞悬液接种至培养器皿进行培养;

10. 接种 48 h 后进行首次换液;

11. 后续常规每周更换 2 次培养液;

12. 持续培养 7~10 d,脂肪干细胞逐步达到细胞融合状态。

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